SYBR Green I

一种具有绿色激发波长的染料

SYBR Green I是一种结合于所有dsDNA双螺旋小沟区域的具有绿色激发波长染料。在游离状态下,SYBR Green I发出微弱的荧光,但一旦与双链DNA结合后,荧光大大增强。因此,SYBR Green I的荧光信号强度双链DNA的数量相关,可以根据荧光信号检测PCR体系存在的双链DNA数量。SYBR Green I 的最大吸收波长约为497nm,发射波长最大约为520nm。

主要用途
SYBR Green I是高灵敏的DNA荧光染料,适用于各种电泳分析,操作简单:无须脱色或冲洗。至少可检出20pg DNA,高于EB染色法25-100倍。SYBR Green I 与dsDNA 结合荧光信号会增强800-1000倍,用SYBR Green I染色的凝胶样品荧光信号强,背景信号低。可适用于多种电泳分析。
SYBR Green I 适合于多种凝胶电泳方法:琼脂糖凝胶聚丙烯酰胺凝胶电泳脉冲电场凝胶电泳,和毛细管电泳等。
SYBR Green I 与双链DNA的亲和力非常高,因此可以用做电泳前染色,对分子生物学中常用的酶(如:Taq 酶、逆转录酶、内切酶、T4连接酶等)没有抑制作用。另外,SYBR Green I 与EB相比,诱变能力大大降低。
SYBR Green I 核酸凝胶染液(SYBR Green Nucleic Acid Gel Stains)是一种高敏感性的荧光染液,用于检测琼脂糖凝胶聚丙烯酰胺凝胶中的双链DNA和寡核苷酸。当染液与核酸结合后,SYBR Green I 核酸凝胶染液的荧光信号会明显增强,因此经SYBR GreenI 核酸凝胶染液染色的凝胶显示出非常好的信噪比,没有背景荧光。为获得最佳的结果,凝胶最好在跑胶后再进行染色。SYBR GreenI 核酸凝胶染液用于低含量的PCR产物,凋亡研究及异源双链分析中少量DNA的检测较为理想。可应用于:DNA和RNA的检测;SSCP及异源双链分析。
主要特点
高灵敏:至少可检出20pg DNA,高于EB染色法25-100倍。
信噪比高:样品荧光信号强,背景信号低。
操作简单:无须脱色或冲洗。
适用范围广:可适用于多种电泳分析
使用方便:不影响其它修饰酶作用。
经济:价格比银染便宜。
使用方法
预染方法
1. 该方法适用于琼脂糖凝胶电泳和PAGE凝胶电泳
2. 工作液的配制:用电泳缓冲液将10000×的SYBR GreenⅠ稀释100倍,即为SYBR GreenⅠ工作液。SYBR GreenⅠ工作液可以置2-8℃冷藏一个月以上。
3. 制胶:按常规方法制胶,不含任何染料
4. 样品染色:向分析样品中加入SYBR GreenⅠ工作液和载样缓冲液,室温放置10分钟,使SYBR GreenⅠ与样品中DNA充分结合。SYBR GreenⅠ工作液加入量为总上样量的1/10。
5. DNA Marker染色:将5μL DNA Marker和1μLSYBR GreenⅠ工作液混匀,室温放置5分钟,使SYBR GreenⅠ与DNA充分结合。
6. 上样、电泳:按常规操作。
7.检测:用ABLUe可见光核酸检测仪器检测
后染方法
1. 按照常规方法进行电泳。
2. 用PH 7.0 - 8.5 的缓冲液(如:TAE,TBE 或 TE),按照10000:1的比例稀释SYBR GreenⅠ浓缩液,混匀,制成染色溶液。
3. 将染色溶液倒入合适的聚丙烯容器中,放入凝胶,用铝箔等盖住容器使染料避光。室温振荡染色10-30分钟,染色时间因凝胶浓度和厚度而定。聚丙烯酰胺凝胶直接在玻璃平皿上染色,将配好的工作溶液轻轻地倒在胶板上,让工作液均匀地覆盖整个胶板,并染色30分钟。玻璃平皿必须预先经过硅烷化溶液处理(避免染料吸附在玻璃表面上)。
4. 用ABLUe观测。蓝光可透过玻璃,观测聚丙烯酰胺凝胶时,可直接将托有凝胶的玻璃平皿放入ablue内观测。
注意事项
2. 在常规用酒精沉淀核酸的过程中,SYBR Green I 可以全部从双链核酸上去掉。
3. 如果想对用 SYBR Green I 染过的胶进行 Southern blots,建议在预杂化和杂化溶液中加入 0.1%- 0.3% 的SDS
4. 在紫外照射透视下,与双链 DNA 接合的 SYBR Green I 呈现绿色荧光。如果胶中含有单链 DNA 则颜色为橘黄而不是绿色。
5. SYBR Green对玻璃和非聚丙烯材料具有一定亲合力。建议在稀释、贮存、染色等使用过程中用聚丙烯类容器。
操作过程
1实验方法
囊腔组织经液氮速冻后,放入-70℃冰箱保存备用。Real-time PCR法检测EMMPRIN的mRNA含量。
1.1组织总RNA提取:
(1)从液氮中取出组织,用已处理过的剪刀剪取约100mg组织块,加入1ml Trizol试剂,转移至匀浆器中,将匀浆器置于冰水上充分研磨,转移研磨好的匀浆液至无RNA酶/无DNA酶的1.5ml离心管中,室温下静置5min。
(2)加入0.2ml氯仿,颠倒混匀10次充分混匀,室温下静置2-5min,4℃状态下进行离心,离心速度为12000r/min,离心时间10min;
(3)小心吸取上层水相溶液至另一无RNA酶/无DNA酶的1.5ml离心管中,小心吸取上层水相,勿碰及或吸走中间层,否则要重新离心再吸取(可吸取约0.4-0.5 ml)。
(4)加入等体积异丙醇,颠倒混匀后室温下静止15min,4℃状态下进行离心,离心速度为12000r/min,离心时间15min。小心弃上清,沿管壁加入1ml 75%乙醇(DEPC水配置,预冷),室温下静置1min,4℃状态下离心,速度7500r/min,离心时间5min;小心倒掉上清,再4℃状态下离心,速度3500r/min,时间离心1min;离心后用10μl枪头小心吸去残余液体,最后用30μlDEPC-H2O溶解RNA。
(5)提取的总RNA经紫外分光光度计测定,提取物浓度OD 260/280比值在1.8-2.0之间。
1.2逆转录反应:
用上述细胞中提取的2μg总RNA在下述20μl反应体系中逆转录成cDNA,该反应体系组成如下:5×RT-Buffer 4μl, oligd(T) 2.5μmol/L, dNTPs 5mmol/L, RNA酶抑制剂(RNAsin) 20U。首先70?C预变性5min,然后加入逆转录酶MMLV 200U, 再于42?C孵育1h,72?C加热10min灭活逆转录酶。
1.3 Real-time PCR 反应:
1.3.1 方法学确认 根据引物相关信息PCR扩增,PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳分析并且对其纯化,假设纯化所得DNA浓度为a×10x,对其做10倍梯度稀释7次,稀释浓度依次为a×10x-1、a×10x-2、a×10x-3、a×10x-4、a×10x-5、a×10x-6、a×10x-7选择合适稀释品作为标准品模板。
1.3.2 取上述逆转录反应产物于20μl反应体系中进行PCR反应。。
PrimerSequence (5′to 3′)Length(bp)
GAPDH Forward primer5'-GTCGGTGTGAACGGATTT-3'276
GAPDH Reverse primer5'-ACTCCACGACGTACTCAGC-3'
EMMPRINForward primer5’- TGGCCTTCACGTTCCTGAGT -3’215
EMMPRINReverse primer5’ - GTCATCTGCATCCACCGTGT-3’
反应体系组成如下:10×Buffer(2μl)、dNTP 10 mmol /L(0.4μl)、MgCl2 25mmol/L (1.6μl)、5U TaqDNA多聚酶(0.3μl)、模板2μl、上、下游特异引物各0.25μl、去离子水16.2μl。
按下述热循环参数运行:GAPDH内参照基因;预变性:94×2min;变性:94×2s,退火56×15s,延伸72×15S(采光) 共30个循环。EMMPRIN基因;预变性:94×2min;变性:94×2s,退火58×15s,延伸72×12s (采光)共35个循环。以SLAN软件分析并计算目的基因EMMPRIN与GAPDH的Ct值。
2 实验结果
2.1内参照基因、目的基因琼脂糖凝胶电泳结果:随机选择3份标本PCR扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳,在理论片段大小位置有单一条带且无杂带引物二聚体
2.2 试剂扩增效率验证:经过对标准品定量,内参照基因GAPDH扩增检测Ct值与浓度对数值的相关系数为0.99996,目的基因EMMPRIN扩增检测Ct值与浓度对数值的相关系数为0.99969。内参照基因和目的基因皆有良好的扩增效率(相关系数>0.98)。可用ΔCt法行数据统计
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